利用（yòng）在小水滴中包裹多個單細胞或單細胞器的方法，可以將光（guāng）學誘捕法和微流控小滴生成技術結合在一起。 　　目前，傳統的試管（guǎn）檢測技術正逐步（bù）被淘汰。由於微流控技術使得在（zài）日益小型化的容積內研究生（shēng）化反應過程變得可能，實驗室級的研究正向納米級方（fāng）向深（shēn）入發展。美國華（huá）盛頓（dùn）大學的Daniel Chiu及其同事，在最近發明了一（yī）種新方法，即僅用10-12升到10-15升的小水滴就可以包裹住（zhù）多個單細胞或單細胞（bāo）器。 　　在近期《分析化學》雜誌上（shàng）的（de）一（yī）篇文章中，Chiu及其同事提出了兩種新方法，這兩種方法可以將微流控小滴生成技術和光學誘捕法（fǎ）結合在一起，以便有選（xuǎn）擇性地、穩定地包裹某個單細胞或細胞器。一（yī）種方法是利（lì）用T型槽，在T型槽內水相可以被垂（chuí）直地導（dǎo）入到流動的（de）油相內。當對（duì）水相施加壓力（lì）時，流動（dòng）的油（yóu）可以（yǐ）連續切斷小水滴。另一種方法是利（lì）用壓縮槽，在壓縮槽內水相被擠壓（yā）通過狹（xiá）窄的管道，並流入到一個大的油池中。被堵住的水在管（guǎn）道內形成小（xiǎo）水（shuǐ）滴，然後（hòu）進入油池中。在這兩種方法中，利用光學（xué）鑷（niè）子將細胞或細胞器放在油水界麵上，這樣微粒就被包裹在正在形成的小滴中。Chiu認為（wéi），與以前的（de）微（wēi）流控技術設計相比，這兩種方（fāng）法有了明顯改進，“利用光學方法移動細胞具有（yǒu）極好的可控製性和靈（líng）活性”。 　　具有較（jiào）高表麵電（diàn）荷的（de）微粒（如細（xì）胞或細胞（bāo）器）一（yī）旦在小水（shuǐ）滴中被捕獲，它們就不能穿過水油（yóu）界麵恢複到原來的狀態（tài），並被穩定地限製。Chiu的研究小組現已成功對單個B淋（lín）巴細（xì）胞和單個線粒體進行了包裹，這（zhè）表明利用該方法研究單細胞和單（dān）細胞器頗具潛力。Chiu解釋說，“研究（jiū）單細胞很有意義，因為每個細胞都是不同的”，“這種方法不僅僅用（yòng）於研究普通細胞，也可以（yǐ）用於研究稀有細胞（bāo）。” 　　由（yóu）於微粒（lì）被固定（dìng）在比其自身體積還小的小滴中，因而細胞內（nèi）含物在溶解前和溶（róng）解後的濃度保持不變（biàn），這一（yī）點對於利用單細胞進行生化分析非（fēi）常關鍵。為了說（shuō）明利用該方法進（jìn）行此類研究（jiū）的作用，研究者進行（háng）了酶活性分析實驗。一個包含（hán）熒（yíng）光素β-D-2-吡喃半乳糖（FDG，是（shì）細胞內β-半乳糖苷酶的熒光底物）的小（xiǎo）水滴捕獲了一（yī）個堅（jiān）果細胞（bāo），隨著光解和β-半乳糖苷酶的釋放，小（xiǎo）水滴中的反應產物?熒光素不（bú）斷積（jī）累，這使小水滴中熒（yíng）光素含量非常高。如果沒有微小水滴容積的限製，稀釋作用會使熒光（guāng）素難以（yǐ）被示蹤顯示。Chiu說，“你可以用分辨率很高（gāo）的顯微鏡來觀（guān）察細胞和亞細（xì）胞的結構，但你無法通過顯（xiǎn）微鏡（jìng）獲得更多的生化信息。”“我們正努力開發一個平台，使我們能夠在非常小的尺度上做些改變，並能在細胞或細（xì）胞（bāo）器水平上獲取一些信息，而通常（cháng）這些信息（xī）隻有（yǒu）通過大量的生化分析才能得到（dào）。”